Microscopie

Responsable de la plateforme : Mathieu ERHARDT

Description

La plateforme de microscopie et d’imagerie cellulaire a été créée en 1998. Son programme scientifique a pour but l’étude par différentes techniques de microscopie de l’expression spatio-temporelle de gènes d’organismes supérieurs, animaux ou végétaux, et l’étude des biomatériaux par la caractérisation des processus biophysiques et biologiques aux interfaces. La plate-forme adhère à la charte des Plates-Formes Technologiques du Vivant et a reçu un label RIO en 2001, 2004 et 2006. Elle fait partie de la Plateforme d’imagerie cellulaire Strasbourg Esplanade qui regroupe les compétences et les matériels de 7 unités de recherche CNRS, INSERM, UNISTRA et INRA.

Missions

  • Soutenir l’activité de recherche des équipes internes et externes à la plateforme.
  • Développer et implanter de nouvelles méthodologies.
  • Assurer la formation des personnels aux nouvelles techniques par l’organisation de formations individuelles ou collectives.
  • Participer à l’enseignement supérieur et à l’animation scientifique en direction du public.
  • Assurer le bon fonctionnement du matériel commun.

Expertises

Microscopie électronique et histologie

Responsable : Mathieu ERHARDT

Expertise, développement et formation pour les technologies suivantes :

  • Microscopie électronique à transmission, à balayage, serial block face imaging
  • Histologie végétale, cytologie, hybridation in situ

Microscopie optique et analyse d’image

Responsable : Jérôme MUTTERER

Expertise, développement et formation pour les technologies suivantes :

  • Microscopie fond clair, épifluorescence, confocale, temps de vie de fluorescence
  • Traitement et analyse d’image

Membres de la plateforme

Dernières publications

  • SCHIAFFINI M., CHICOIS C., POUCLET A., CHARTIER T., UBRIG E., GOBERT A., ZUBER H., MUTTERER J., CHICHER J., KUHN L., HAMMANN P., GAGLIARDI D. and GARCIA D.

    A NYN domain protein directly interacts with DECAPPING1 and is required for phyllotactic pattern

    Plant Physiology, 188(2):1174–1188, 2022. | DOI : 10.1093/plphys/kiab529DOI logo

  • HUANG C., MUTTERER J. and HEINLEIN M.

    In vivo aniline blue staining and semi-automated quantification of callose deposition at plasmodesmata

    Methods in Molecular Biology, 2457:151-165, 2022. | DOI : 10.1007/978-1-0716-2132-5_9DOI logo

  • CHEVALIER Q., GALLÉ J.B., WASSER N., MAZAN V., VILLETTE C., MUTTERER J., ELUSTONDO M.M., GIRARD N., ELHABIRI M., SCHALLER H., HEMMERLIN A. and VONTHRON-SENECHEAU C.

    Unravelling the Puzzle of Anthranoid Metabolism in Living Plant Cells Using Spectral Imaging Coupled to Mass Spectrometry

    Metabolites, 11:571, 2021. | DOI : 10.3390/metabo11090571DOI logo

  • GOSWAMI R., ASNACIOS A., MILANI P., GRAINDORGE S., HOULNÉ G., MUTTERER J., HAMANT O. and CHABOUTÉ M.E.

    Mechanical shielding in plant nuclei.

    Current Biology, 2013-2025, 2020. | DOI : 10.1016/j.cub.2020.03.059DOI logo

  • INCARBONE M., SCHEER H., HILY J.M., KUHN L., ERHARDT M., DUNOYER P., ALTENBACH D. and RITZENTHALER C.

    Characterization of a DCL2-insensitive Tomato bushy stunt virus isolate infecting Arabidopsis thaliana

    Viruses, 1121, 2020. | DOI : doi.org/10.3390/v12101121DOI logo