Microscopie

Responsable de la plateforme : Mathieu ERHARDT

Description

La plateforme de microscopie et d’imagerie cellulaire a été créée en 1998. Son programme scientifique a pour but l’étude par différentes techniques de microscopie de l’expression spatio-temporelle de gènes d’organismes supérieurs, animaux ou végétaux, et l’étude des biomatériaux par la caractérisation des processus biophysiques et biologiques aux interfaces. La plate-forme adhère à la charte des Plates-Formes Technologiques du Vivant et a reçu un label RIO en 2001, 2004 et 2006. Elle fait partie de la Plateforme d’imagerie cellulaire Strasbourg Esplanade qui regroupe les compétences et les matériels de 7 unités de recherche CNRS, INSERM, UNISTRA et INRA.

Missions

  • Soutenir l’activité de recherche des équipes internes et externes à la plateforme.
  • Développer et implanter de nouvelles méthodologies.
  • Assurer la formation des personnels aux nouvelles techniques par l’organisation de formations individuelles ou collectives.
  • Participer à l’enseignement supérieur et à l’animation scientifique en direction du public.
  • Assurer le bon fonctionnement du matériel commun.

Expertises

Microscopie électronique et histologie

Responsable : Mathieu ERHARDT

Expertise, développement et formation pour les technologies suivantes :

  • Microscopie électronique à transmission, à balayage, serial block face imaging
  • Histologie végétale, cytologie, hybridation in situ

Microscopie optique et analyse d’image

Responsable : Jérôme MUTTERER

Expertise, développement et formation pour les technologies suivantes :

  • Microscopie fond clair, épifluorescence, confocale, temps de vie de fluorescence
  • Traitement et analyse d’image

Membres de la plateforme

Dernières publications

  • SCHIAFFINI M., CHICOIS C., POUCLET A., CHARTIER T., UBRIG E., GOBERT A., ZUBER H., MUTTERER J., CHICHER J., KUHN L., HAMMANN P., GAGLIARDI D. and GARCIA D.

    A NYN domain protein directly interacts with DECAPPING1 and is required for phyllotactic pattern

    Plant Physiology, 188(2):1174–1188, 2022. | DOI : 10.1093/plphys/kiab529DOI logo

  • HUANG C., MUTTERER J. and HEINLEIN M.

    In vivo aniline blue staining and semi-automated quantification of callose deposition at plasmodesmata

    Methods in Molecular Biology, 2457:151-165, 2022. | DOI : 10.1007/978-1-0716-2132-5_9DOI logo

  • CHEVIGNY N., LOTFI F., LE BLEVENEC A., NADIRAS C., FERTET A., BICHARA M., ERHARDT M., DIETRICH A., RAYNAUD C. and GUALBERTO J.M.

    RADA-dependent branch migration has a predominant role in plant mitochondria and its defect leads to mtDNA instability and cell cycle arrest

    PLoS Genetics, e1010202, 2022. | DOI : 10.1371/journal.pgen.1010202DOI logo

  • JOHANN TO BERENS P., SCHIVRE G., THEUNE M., PETER J., SALL S.O., MUTTERER J., BARNECHE F., BOURBOUSSE C. and MOLINIER J.

    Advanced image analysis methods for automated segmentation of subnuclear chromatin domains

    Epigenomes, 6(4):34-40, 2022. | DOI : 10.3390/epigenomes6040034DOI logo

  • CHEVALIER Q., GALLÉ J.B., WASSER N., MAZAN V., VILLETTE C., MUTTERER J., ELUSTONDO M.M., GIRARD N., ELHABIRI M., SCHALLER H., HEMMERLIN A. and VONTHRON-SENECHEAU C.

    Unravelling the Puzzle of Anthranoid Metabolism in Living Plant Cells Using Spectral Imaging Coupled to Mass Spectrometry

    Metabolites, 11:571, 2021. | DOI : 10.3390/metabo11090571DOI logo