L’exposition au stress génotoxique (UV) peut affecter l’intégrité cellulaire et endommager les compartiments nucléaire (ADN) et cytoplasmique (ARN), altérant l’intégrité de l’(épi)génome et l’expression des gènes (transcription et traduction). Ainsi, la capacité des organismes vivants à faire face aux effets délétères des agents génotoxiques repose sur les interactions entre différents processus de surveillance empêchant les réarrangements chromosomiques, les altérations de l’épigénome et la baisse d’activité de la machinerie transcriptionnelle/traductionnelle. Nous souhaitons décrypter les mécanismes moléculaires contrôlant l’intégrité de l’(épi)génome et la traduction en réponse à une exposition aux stress génotoxiques.
Thème de recherche
Projets
Surveillance traductionnelle
La synthèse des protéines joue un rôle central dans le contrôle de l’expression des gènes chez les eucaryotes, notamment dans des conditions de stress. L’accumulation de dommages sur l’ARNm conduit à une collision entre ribosomes et donc à un arrêt traductionnel. TOR, en tant que kinase principale liée au stress, ajuste le renouvellement des ribosomes en fonction des besoins d’efficacité de la traduction et de recyclage dépendant de l’autophagie. Nous visons à comprendre comment la kinase TOR fonctionne au niveau moléculaire et comment les changements dans son activité conduisent à un contrôle traductionnel lors d’une exposition à un stress génotoxique. Nous espérons produire une image haute résolution des changements d’expression génique au cours de la réponse au stress génotoxique affectant la reprogrammation traductionnelle. De plus, nous caractériserons le rôle des membres de la famille PI3KK (ATM, ATR et TOR) dans le contrôle traductionnel de la réponse au stress génotoxique.
Membres de l'équipe
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Jean MOLINIER
Directeur de recherche / Research director
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Mikhail SHCHEPETILNIKOV
Chargé de recherche / Senior researcher
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Sébastien STAERCK
Technicien / Technician
Choix de publications
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JOHANN TO BERENS P., PETER J., KOECHLER S., BRUGGEMAN M., STAERCK S. and MOLINIER J.
The histone demethylase JMJ27 acts during the UV-induced modulation of H3K9me2 landscape and facilitates photodamage repair
Nature Plants, 0, 2024. | DOI : https://doi.org/10.1038/s41477-024-01814-9
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JOHANN TO BERENS P., GOLEBIEWSKA K., PETER J., STAERCK S. and MOLINIER J.
UV-B-induced modulation of constitutive heterochromatin content in Arabidopsis thaliana
Photochemical & Photobiological Sciences, 22(9):2153-2166, 2023. | DOI : 10.1007/s43630-023-00438-w
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DONG Y., SROUR O., LUKHOVITSKAYA N., MAKARIAN J., BAUMBERGER N., GALZITSKAYA O., ELSER D., SHCHEPETILNIKOV M. and RYABOVA L.
Functional analogs of mammalian 4E-BPs reveal a role for TOR in global plant translation
Cell Reports, 21, 2023.
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JOHANN TO BERENS P., SCHIVRE G., THEUNE M., PETER J., SALL S.O., MUTTERER J., BARNECHE F., BOURBOUSSE C. and MOLINIER J.
Advanced image analysis methods for automated segmentation of subnuclear chromatin domains
Epigenomes, 6(4):34-40, 2022. | DOI : 10.3390/epigenomes6040034
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GRAINDORGE S., COGNAT V., JOHANN TO BERENS P., MUTTERER J. and MOLINIER J.
Photodamage repair pathways contribute to the accurate maintenance of the DNA methylome landscape upon UV exposure
PLoS Genetics, 15(11):e1008476, 2019. | DOI : 10.1371/journal.pgen.1008476